對(duì)于很多科研汪來說,細(xì)胞是脆弱又重要的寶貝之一,承擔(dān)著重要的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)希望。尤其是在凍存復(fù)蘇的時(shí)候,經(jīng)常會(huì)因?yàn)橐恍┬〖?xì)節(jié)導(dǎo)致問題。比如:沒有控制好細(xì)胞的生長(zhǎng)密度細(xì)胞的密度對(duì)細(xì)胞的生存質(zhì)量有著重要的影響,畢竟它們是一群又不能擠著了也不能孤獨(dú)的嬌貴寶寶。密度過高會(huì)讓細(xì)胞沒有足夠的生存空間,密度過低會(huì)讓細(xì)胞無法互相連接健康生長(zhǎng)。建議大家在細(xì)胞接種前,一定要調(diào)整好適合細(xì)胞生長(zhǎng)的濃度,提高細(xì)胞的存活率。溫度控制不達(dá)標(biāo)慢凍快融是細(xì)胞凍存復(fù)蘇的*關(guān)鍵詞之一無血清凍存液注意事項(xiàng):請(qǐng)選擇對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞進(jìn)行凍存。長(zhǎng)沙無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液。因?yàn)殡x心的目的是兩個(gè),去除DMSO,去除死細(xì)胞,這個(gè)是標(biāo)準(zhǔn)流程,但對(duì)一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時(shí)間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會(huì)受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對(duì)細(xì)胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗(yàn)中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇,結(jié)果無有異常。重慶無血清細(xì)胞凍存液無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能:特別配方(主要成分為DMSO和氨基酸)有效提高細(xì)胞凍存活率和復(fù)蘇活力。
細(xì)胞凍存時(shí)間和操作步驟:1、首先我們需要凍存培養(yǎng)液,通常細(xì)胞凍存液含10%的DMSO,或者是甘油、10-20%的小牛血清;、取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,并且還需要用PBS進(jìn)行清洗,需要注意在這里要丟棄掉舊的細(xì)胞凍存液;3.去除PBS,加入適量的胰蛋白酶,以覆蓋住培養(yǎng)皿表面為宜,然后把單層生長(zhǎng)的細(xì)胞消化掉;然后離心1000rpm5min時(shí)間;4、去除胰蛋白酶,加入凍存培養(yǎng)液,輕輕吹打使細(xì)胞的分布變得均勻,調(diào)節(jié)細(xì)胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml,需要注意這是較佳的細(xì)胞密度;5、將細(xì)胞裝入凍存管之中,每管的含量應(yīng)該保持在1~1.5ml之間。在凍存管上標(biāo)明細(xì)名稱、時(shí)間、操作者;6、較后要說的就是細(xì)胞凍存的時(shí)間了,對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序來說,需要進(jìn)行梯度降溫,降溫速率-1~-2℃/min,一旦溫度達(dá)到-25℃以下時(shí),那么就可增至-5℃~-10℃/min;等到-100℃的時(shí)候,可迅速的放入到液氮之中。
無血清細(xì)胞凍存液細(xì)胞凍存步驟:1.常規(guī)方法收集對(duì)數(shù)期的貼壁細(xì)胞或懸浮細(xì)胞于試管中。2.確認(rèn)所需凍存的細(xì)胞數(shù)量。3.將所需凍存細(xì)胞收集于離心管中,1000rpm,5min離心,收集細(xì)胞沉淀,并棄掉上清液。4.加入適量的凍存液于離心管中,加入量按照細(xì)胞保存濃度為5X105至1X107/ml密度,輕柔的混勻細(xì)胞,獲取細(xì)胞混合液。5.將獲取的細(xì)胞混合液按照1~1.5ml/管,分裝于凍存管中。6.將凍存管直接放入-80℃保存,可長(zhǎng)期保存。無血清細(xì)胞凍存液,通用于各種動(dòng)物細(xì)胞系及tumour細(xì)胞系。特別的配方能有效提高細(xì)胞存活率和復(fù)蘇能力。不含血清,無病毒、霉菌和支原體等微生物污染,確保凍存細(xì)胞安全。非常適用于無血清細(xì)胞培養(yǎng)和蛋白表達(dá)細(xì)胞的凍存。一些保護(hù)劑,易于穿透細(xì)胞,避免細(xì)胞內(nèi)部水分子形成冰晶損傷細(xì)胞。
細(xì)胞凍存和復(fù)蘇的原則是:慢凍速融,這樣更加有利于保持細(xì)胞的活力。凍存細(xì)胞不加任何保護(hù)劑,會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)冰晶的產(chǎn)生,從而使細(xì)胞產(chǎn)生內(nèi)源性的機(jī)械損傷,引起細(xì)胞內(nèi)環(huán)境滲透壓,PH,電解質(zhì)等的改變,進(jìn)而促使細(xì)胞死亡。在過去的幾十年中,科研工作者將培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液,并配合手工使細(xì)胞從4℃,-20℃,-80℃到液氮中逐步轉(zhuǎn)移使其達(dá)到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲(chǔ)存時(shí)間一般比較短,不能滿足時(shí)間跨度大的實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目的需求。且這樣人力和時(shí)間成本大,人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實(shí)驗(yàn)結(jié)果帶來了不穩(wěn)定性。無血清細(xì)胞凍存液使用方法:選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。金華石家莊無血清細(xì)胞凍存液
在細(xì)胞內(nèi)外進(jìn)行雙重保護(hù),較大提高了細(xì)胞復(fù)蘇存活率。長(zhǎng)沙無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
無血清細(xì)胞凍存液的使用方法及注意事項(xiàng):1.將分裝好的細(xì)胞凍存管,直接置于-80度冰箱過夜保存,次日投入液氮中保存即可備注:1、凍存過程中,第2步在冰袋附近操作時(shí),低溫避免保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞造成損傷。2、細(xì)胞凍存管一定要保證完全密封,否則在復(fù)蘇過程中有可能會(huì)炸(1)提前開啟水浴鍋,溫度調(diào)節(jié)到37(2)將凍存的細(xì)胞冷凍管從液氮中取出,迅速置于水浴鍋中融化,盡量1min融化,時(shí)間越短,對(duì)細(xì)胞影響越小。(3)將融化后的含細(xì)胞的冷凍保存液迅速析出置于新鮮培養(yǎng)基中充分混勻,(如細(xì)胞冷凍保存液為500ul,則加入到5ml新鮮培養(yǎng)基中,如細(xì)胞冷凍保存液位1ml,則加入10ml新鮮培養(yǎng)基中。)(4)混勻后立即離心,800轉(zhuǎn),3min即可離心結(jié)束后棄上清,加入預(yù)溫的新鮮培養(yǎng)液。(5)混勻后分瓶置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。(二氧化碳濃度根據(jù)培養(yǎng)基要求決定,通常為5%【注意事項(xiàng)】細(xì)胞系凍存密度備注正常人成纖維細(xì)胞1~310cells/ml雜交瘤細(xì)胞1~310cells/ml某些hybridoma會(huì)因冷凍濃度太高而在解凍24小時(shí)后死去。長(zhǎng)沙無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商