細(xì)胞凍存和復(fù)蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細(xì)胞的活力。凍存細(xì)胞不加任何保護(hù)劑，會導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)冰晶的產(chǎn)生，從而使細(xì)胞產(chǎn)生內(nèi)源性的機(jī)械損傷，引起細(xì)胞內(nèi)環(huán)境滲透壓，PH，電解質(zhì)等的改變，進(jìn)而促使細(xì)胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細(xì)胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉(zhuǎn)移使其達(dá)到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時(shí)間一般比較短，不能滿足時(shí)間跨度大的實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目的需求。且這樣人力和時(shí)間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實(shí)驗(yàn)結(jié)果帶來了不穩(wěn)定性。無血清凍存液使用方法：將加有凍存液的細(xì)胞懸液分裝至凍存管中。太原無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹

細(xì)胞凍存注意事項(xiàng)：1、細(xì)胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml－15m培養(yǎng)液，而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。2、復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題：試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中，分裝過多，細(xì)胞濃度過低，不利于細(xì)胞的貼壁。3、加培養(yǎng)基的量放入問題：這個(gè)量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果你加培養(yǎng)基的太少，那么DMSO的濃度就會比較大，就會影響細(xì)胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響，還有一個(gè)說法是1％。所以如果你的凍存液的濃度是10％DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度鄭州正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液推薦廠家無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能：通常細(xì)胞凍存液的配方是由胎牛血清加上DMSO組成。

細(xì)胞凍存：取出凍存管，注明細(xì)胞名稱，代數(shù)，日期。離心后，以無菌吸管吸棄上清，不要吸到底部的細(xì)胞沉淀。將細(xì)胞沉淀與凍存液充分混勻，根據(jù)計(jì)數(shù)結(jié)果，將細(xì)胞總數(shù)調(diào)節(jié)成細(xì)胞數(shù)量為5-10*105/ml為宜。將細(xì)胞凍存懸液分裝進(jìn)細(xì)胞凍存管中，一般2ml的凍存管中裝入1-1.5ml凍存液為宜。嚴(yán)密封口后，使用可控制降溫速度的冷凍裝置冷凍細(xì)胞，使溫度每分鐘大約降低1℃?；蛘?，將裝有細(xì)胞的凍存管放入異丙的醇凍存盒中，然后將凍存盒置于–80℃條件下過夜。若無凍存盒及其他凍存裝置，可以先將凍存管置于4℃30min，再-20℃凍存1h直至完全冷凍，再轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱過夜。第二天將已經(jīng)冷凍的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到液氮容器中，置于液氮上方的氣相空間中儲存

細(xì)胞凍存時(shí)間和操作步驟：1、首先我們需要凍存培養(yǎng)液，通常細(xì)胞凍存液含10%的DMSO，或者是甘油、10-20%的小牛血清；、取對數(shù)生長期細(xì)胞，并且還需要用PBS進(jìn)行清洗，需要注意在這里要丟棄掉舊的細(xì)胞凍存液；3.去除PBS，加入適量的胰蛋白酶，以覆蓋住培養(yǎng)皿表面為宜，然后把單層生長的細(xì)胞消化掉；然后離心1000rpm5min時(shí)間；4、去除胰蛋白酶，加入凍存培養(yǎng)液，輕輕吹打使細(xì)胞的分布變得均勻，調(diào)節(jié)細(xì)胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml，需要注意這是較佳的細(xì)胞密度；5、將細(xì)胞裝入凍存管之中，每管的含量應(yīng)該保持在1～1.5ml之間。在凍存管上標(biāo)明細(xì)名稱、時(shí)間、操作者；6、較后要說的就是細(xì)胞凍存的時(shí)間了，對于標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序來說，需要進(jìn)行梯度降溫，降溫速率-1～-2℃/min，一旦溫度達(dá)到-25℃以下時(shí)，那么就可增至-5℃～-10℃/min；等到-100℃的時(shí)候，可迅速的放入到液氮之中。也可將凍存管放入-20℃冰箱中兩小時(shí)，然后放入-70℃冰箱中進(jìn)行過夜，較后取出凍存管并移入到液氮容器內(nèi)。無血清細(xì)胞凍存液的優(yōu)勢：因不含血清，批次間差異小。

如何提高細(xì)胞凍存成功率：無菌！無菌！無菌！要折騰嬌貴的細(xì)胞寶寶，必須要在無菌超凈環(huán)境下才行。超凈工作臺，所有的儀器用品提前滅菌，培養(yǎng)箱什么的定期用酒精擦干凈。微生物污染對細(xì)胞的影響經(jīng)常是開始的時(shí)候沒發(fā)現(xiàn)，發(fā)現(xiàn)的時(shí)候已經(jīng)結(jié)束了，所以千萬要小心。除了操作中的各種小細(xì)節(jié)，還有一個(gè)實(shí)驗(yàn)雷區(qū)，就是配制細(xì)胞凍存液。常見的凍存液配制要遵循培養(yǎng)基+血清+DMSO的成分要求，根據(jù)細(xì)胞實(shí)際判斷成分配比，還建議使用程控儀，注意配制溫度，一個(gè)不小心就又會影響細(xì)胞的存活效果。在細(xì)胞內(nèi)外進(jìn)行雙重保護(hù)，較大提高了細(xì)胞復(fù)蘇存活率。溫州鄭州無血清細(xì)胞凍存液

程序降溫凍存技術(shù)要點(diǎn)是慢凍，標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1～-2/℃ min。太原無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹

無血清細(xì)胞凍存液與含血清細(xì)胞凍存液對比：傳統(tǒng)的細(xì)胞凍存液是使用培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統(tǒng)稱為含血清細(xì)胞凍存液。含血清細(xì)胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個(gè)小時(shí)（或隔夜），較后才移至液氮罐中進(jìn)行長期的儲存?？梢姡寮?xì)胞凍存液凍存細(xì)胞時(shí)遇到的問題：1.凍存細(xì)胞時(shí)需現(xiàn)配凍存液(如購買市面上通用的含血清細(xì)胞凍存液，此步可省略)。2.需要程序降溫（4℃→-20℃→-80℃→液氮），步驟繁瑣，耗時(shí)耗力。3.含血清，細(xì)胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風(fēng)險(xiǎn)更高。4.血清批次、品質(zhì)間差異導(dǎo)致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。太原無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹